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  • 设备操作: 测试过程中LIX往回缩怎么办?
    内容: 更换传感器(电极),将灌充液灌充长度稍微增加一点;在其他的测试液中模拟测试,观察LIX是否回缩,确定是否是测试液或样品的问题。 ...
  • 设备操作: 校正值偏低怎么办?
    内容: (1)将高浓度的校正液稀释10倍,得到低浓度校正液,重新进行校正。 (2)上述步骤重复两遍无效后,使用待测离子的纯溶液作为两个不同浓度的校正液进行校正,如果此校正液校正出的斜率正常,按照测试方案表中配方,重新配置高、低浓度的校正液和测试液,然后进行校正。 (3)上述步骤无效,更换新的LIX,重新灌充制作传感器。 (4)上述步骤无效,更换参比电极内部保存溶液(3M KCl)。 ...
  • 设备操作: 测试时样品发生漂移怎么办?
    内容: 如果样品小幅度发生漂移不用停止测试,测试时传感器也是可以移动的,只要用方向键沿着样品漂移的方向小幅度移动传感器就可以了,移动的距离要确保跟漂移之前的测试位置保持一致。 ...
  • 设备操作: 参比电极的作用是什么?
    内容:  (1)和传感器(电极)、测试液、前置放大器一起构成电路回路。  (2)提供一个参考电位。 ...
  • 设备操作: 测试时传感器(电极)出现抖动怎么办?
    内容: (1)检查防震台是否未充气。 (2)检查前置放大器、传感器Holder是否未固定牢固。 (3)检查导程螺杆是否长期使用某段量程,造成螺杆的过度磨损,将传感器位置进行移动,换一段导程螺杆的位置进行测试。 (4)检查连接导程螺杆和步进电机的弹簧是否变形。 (5)检查后台软件设置速率是否不合适。 (6)与系统相邻的桌子或操作台是否有人员在使用,影响到传感器(电极)的运动。 ...
  • 设备操作: 传感器(电极)靠近样品时电位值一直变化,稳定时间长怎么办?
    内容: (1)检查传感器(电极)在空白溶液中的电位是否正常。 (2)将样品用测试液进行多次冲洗,并更换新的测试液。 (3)延长样品的平衡时间,并且测试前更换新的测试液。 ...
  • 设备操作: iFlux V1.0测试时发现测试数据中电位差部分没有显示出来怎么办?
    内容: 更换采样规则后,在watch界面,点击samp rules,弹出小窗口后点击OK,再点击use new,之后进行测试。 ...
  • 设备操作: 测试过程中发现传感器(电极)一直移动,无法停止怎么办?
    内容: (1)将运动控制开关关闭,等待运动结束。 (2)联系负责您设备的售后工程师解决此问题。 ...
  • 设备操作: 土培样品的根系尖端容易断,并且测试信号背景电位偏高。
    内容: 土培样品根系避免直接拔出根系,使用清水清洗出整个根系,保证根系的完整性。在测试前,尽量延长一些平衡的时间,测试前更换新的测试液。 ...
  • 设备操作: 盐腺的测试方法是在上方还是侧方。
    内容: 两种方法都可以,但是要看待测细胞的位置方便哪种方式的检测。 ...
  • 设备操作: 仪器是测距离样品不同的2点的离子/分子的浓度差,电极在这2点之间反复往返的运动,由于液体也会被带动,而每时每刻样品释放出来的离子/分子是动态的,会不会不能真实的反映浓度?
    内容: (1)两点间的运动距离是10um-30um,距离是非常短的。 (2)两点间的运动采集数据时间为6秒左右也是避免这些的原因。 (3)专业的设备提供的运动稳定性也是经过验证的。 (4)实验前的空白也是验证的一个标准。 (5)离子分子在测试液中扩散的速度,远远快于NMT传感器运动的速度。即:在传感器到达一个测量点后的瞬间,离子分子就已经达到了新的浓度动态平衡,而且NMT的设计是该传感器还要在该位置等待一小段时间,因此,NMT技术的两点运动测量方式所带来的溶液扰动不会影响到离子分子流速数据的准确性。 ...
  • 设备操作: 植物根、茎的固定方法
    内容: 本篇以水稻幼苗根部为例,两周龄的水稻幼苗,根部呈白色,长度不超过10cm。 准备工具:塑料培养皿、滤纸、树脂块、剪刀、镊子。 具体步骤:   1. 用剪刀将滤纸剪成相同大小的长条(大小根据样品及所选取的培养皿大小来定),之后浸入盛放有测试液的培养皿中,树脂块也一并放进去,进行平衡。 2. 将样品放入测试液中平衡一段时间,具体时间根据情况而定,一般在10min-15min。 3. 用镊子把一条滤纸平放到培养皿底部,将样品放到滤纸上,再用一条滤纸盖住样品。   这里需要注意: (1) 样品需要测定的位置要露出来,而且尽量露出的少一些,否则在测试中样品可能也会有轻微的飘动,可以用镊子轻拉样品来调节。 (2) 样品露出的位置尽量靠近培养皿中部,可以帮助工程师更好的调节电极的位置。 (3) 操作过程中尽量不要碰到需要测定的根部,以免损伤样品。 4. 为了防止加入溶液后样品飘动,可以用树脂块压住滤纸来固定住样品,需要注意的是最好不要将树脂块直接压在样品上,尤其是压在需要测试的位置上。 5. 像水稻这种整体不是很长的样品,可以将其剩余部分盘绕在培养皿中,但是不要挡住需要测定的部位,最后用滴管向培养皿中缓慢加入测试液,直接倒的话可能会把样品冲跑,测试液的量需要没过样品3-5mm,之后就可以拿来测试了。 ...
  • 设备操作: 植物叶片(如:保卫细胞等)的固定方法
    内容: (一)镊子撕取法(适用于叶片较大的植物,例如烟草)   准备工具:培养皿、镊子、双面胶、剪刀、毛笔(或小刷子)等。 具体步骤: 1. 剪一小块双面胶粘在干燥的塑料培养皿底待用,面积不宜太大。 2. 用镊子撕取表皮条(下表皮)。撕取下的表皮条需要一部分透明,另一部分留有绿色叶片用于粘连固定样品。 一般情况下,只要肉眼能看见透明的表皮条,其上就会存在待测的保卫细胞,不宜太大,太大容易卷曲。   3. 将带有透明表皮条的叶片部分粘在双面胶上,透明表皮部分露在双面胶之外。为了使得表皮条跟皿之间能够紧贴,可在远离双面胶的地方滴一小滴测试液,粘之前让表皮吸附一些液体(绿色叶片部分尽量不要粘液体),靠张力将表皮条吸在皿底。   4. 用湿毛笔轻轻刷去表皮条表面的叶肉细胞。   5. 加入测试液平衡一段时间(一般为1-2小时,并加入10000~15000Lux的光照)后倒掉,由于撕取表皮的过程中会造成叶片细胞的破裂,在平衡过程中可以多更换几次测试液,以保证平衡效果。平衡结束后需要更换新鲜测试液即可测试。如果加入测试液后表皮条漂起,再用毛笔轻轻刷一下并更换新鲜的测试液。 (二)胶带粘贴撕取法(适用于叶片较小的植物,例如拟南芥)   准备工具:培养皿、深色绝缘胶带、白色透明胶带(Magic Tape)、剪刀等。 具体步骤: 1.剪取叶片将叶片上表面粘贴在深色绝缘胶带上,并使用剪刀适当修剪叶片边缘。   2.将白色透明胶带边缘剪取一个小的缺口,注意缺口的大小,过大过小都不利于获取叶片的保卫细胞。   3. 使用白色透明胶带带有缺口的地方粘贴叶片的下表皮。 4. 将白色透明胶带撕下,利用两个胶带的粘贴力可以获取叶片下表皮的保卫细胞。   5. 将撕取的样品粘贴固定到干净的培养皿中。     6. 加入测试液平衡一段时间(一般为1-2小时,并加入10000~15000Lux的光照)后倒掉,由于撕取表皮的过程中会造成叶片细胞的破裂,在平衡过程中可以多更换几次测试液,以保证平衡效果。平衡结束后需要更换新鲜测试液即可测试。 ...
  • 设备操作: 细胞及微生物的固定方法
    内容: ● 可以使用此类方法的样品实际上有很多种,例如动植物的细胞、愈伤组织、液泡,单细胞藻类、细菌、酵母菌,再或是花粉粒、花粉管等,固定时整体上遵循一个原则:不管样品是贴壁还是悬浮,需要保证样品在测试过程中不会随意飘动或游动。 本篇以豌豆根部边缘细胞为例。   准备工具:塑料培养皿,旭月公司提供的固定样品玻片,移液枪及枪头,镊子,测试液等。   具体步骤: 1. 取一个干净的培养皿,用移液枪在皿底中间位置滴一滴测试液,然后用镊子夹住一片玻片轻轻压在培养皿底部,防止之后大量加入测试液后玻片漂起来。   2. 用移液枪吸取一定量的样品溶液(具体量依样品而定,一般为100uL-200uL),滴到玻片中间位置,涂抹均匀,然后静置5-10min,使样品能充分被玻片吸附住。   3. 用移液枪吸取一定量测试液,先用镊子轻轻压住玻片边缘,再沿着培养皿边缘缓慢加入测试液,防止玻片漂起来,加入的测试液必须完全没过玻片。   4. 同样沿培养皿边缘用移液枪(或滴管)将皿中测试液吸出(将漂浮的细胞冲掉),然后再加入新鲜的测试液就可以进行测试了。   注意以下事项: 1. 尽量将样品在玻片上涂抹开,让样品充分接触到玻片,这样才能起到作用。 2. 加溶液时,一定要用镊子按住玻片边缘。因为加溶液时很容易将玻片冲起来,在溶液的影响下使得样品被冲到玻片下方,无法测试。所以不仅要按住玻片边缘,更要缓缓加入溶液。 3. 吸取溶液时同样要缓缓的,并且不要伸到液面最低端吸取,这样容易将样品吸走。 ...
  • 设备操作: 植物种子与类似形状样品的固定方法
    内容: ● 可以使用此类方法的样品实际上有很多种,例如动植物的细胞、愈伤组织、液泡,单细胞藻类、细菌、酵母菌,再或是花粉粒、花粉管等,固定时整体上遵循一个原则:不管样品是贴壁还是悬浮,需要保证样品在测试过程中不会随意飘动或游动。 本篇以豌豆根部边缘细胞为例。   准备工具:塑料培养皿,旭月公司提供的固定样品玻片,移液枪及枪头,镊子,测试液等。   具体步骤: 1. 取一个干净的培养皿,用移液枪在皿底中间位置滴一滴测试液,然后用镊子夹住一片玻片轻轻压在培养皿底部,防止之后大量加入测试液后玻片漂起来。   2. 用移液枪吸取一定量的样品溶液(具体量依样品而定,一般为100uL-200uL),滴到玻片中间位置,涂抹均匀,然后静置5-10min,使样品能充分被玻片吸附住。   3. 用移液枪吸取一定量测试液,先用镊子轻轻压住玻片边缘,再沿着培养皿边缘缓慢加入测试液,防止玻片漂起来,加入的测试液必须完全没过玻片。   4. 同样沿培养皿边缘用移液枪(或滴管)将皿中测试液吸出(将漂浮的细胞冲掉),然后再加入新鲜的测试液就可以进行测试了。   注意以下事项: 1. 尽量将样品在玻片上涂抹开,让样品充分接触到玻片,这样才能起到作用。 2. 加溶液时,一定要用镊子按住玻片边缘。因为加溶液时很容易将玻片冲起来,在溶液的影响下使得样品被冲到玻片下方,无法测试。所以不仅要按住玻片边缘,更要缓缓加入溶液。 3. 吸取溶液时同样要缓缓的,并且不要伸到液面最低端吸取,这样容易将样品吸走。 ...
  • 设备操作: 适于体视镜检测样品的固定方法
    内容: ● 对于测试鸡蛋、植物果实、合金等不透光的样品来说,倒置显微镜无法满足NMT技术的测试要求,需要使用体视显微镜来进行测试。此类样品的固定方法比较特殊。 本篇以柑橘果实为例,展示体视镜测试中样品的固定方法。   准备工具:将离心管盖或者其它大小适中的盖状容器打孔后的器具、胶水(不影响测试即可)、移液枪等。     具体步骤: 1. 根据测试部位,将待测部位露出,使用移液枪在测试样品表面或者离心管盖子底部涂抹适量的胶水。   2. 将离心管盖固定在待测样品上,固定时可根据情况在胶水少的部位再添加一些胶水,或是用胶水将离心管盖与样品链接缝处粘住,静止一段时间待胶水晾干。   3. 加入蒸馏水冲洗,目的是将胶水表面的物质冲掉,避免对测试信号产生影响。并检查粘贴后的器具是否漏水,如发现漏水则需要重新进行固定。   4. 加入测试液平衡一段时间(一般为10-15min)后倒掉,再加入新鲜的测试液即可进行测试。 ...
  • 安装培训: 我们要进行培训的话可以开什么种类的发票?
    内容: 您可以选择试剂耗材、测试服务、培训费等种类的发票,详细信息可以联系负责您单位系统的售后服务工程师或者拨打电话010-82622628咨询了解。 ...
  • 文献电子报: J Exp Bot:调节拟南芥盐耐受性的新SOS通路 | NMT植物耐盐创新平台
    内容: 基本信息 主题:调节拟南芥盐耐受性的新SOS通路 期刊:Journal of Experimental Botany 研究使用平台:NMT植物耐盐创新平台 标题:The protein kinase complex CBL10–CIPK8–SOS1 functions inArabidopsis to regulate salt tolerance 作者:海南大学江行玉、周扬 doi:10.1093/jxb/erz549       检测指标 Na+       检测样品 拟南芥(WT和cipk8突变体)叶肉组织   离子流实验处理方法     7日龄的拟南芥幼苗在含有100 mM NaCl的MS平板中生长24小时   Na+流结果   ...
  • 设备操作: 什么是校正及校正的目的
    内容: NMT测试中的流速传感器校正指的是:将流速传感器放入已知离子浓度(不同浓度,2个或3个)的溶液中读取电压值,以Nernst方程为基础,建立浓度和电压的关系。 校正的目的主要有两个: 建立浓度和电压的线性关系,用于流速的计算。同时确定流速传感器是否正常工作。 保证测量结果的准确性。所以需要校正时必须校正。 正常情况下流速传感器在一次测试中最少需要校正2次,即测试开始前一次,结束时一次,有些特殊的流速传感器,例如Cl-流速传感器,为了获得准确的数据,需要多次校正,这属于正常的校正。 校正和流速传感器漂移有关,漂移是一个持续的过程,一般来讲,当1价离子电位变化10mV以上,2价离子电位变化5mV以上时,需要再次校正。 有的数据在校正前后算得的流速差别很大,造成的原因是因为重新校正后,会得到新的斜率值和截距值,如果没有用新的斜率值和截距值计算数据的话,校正前后算出来的结果就会差的比较大,所以要特别注意。但是有时候,流速差别较大可能往往表现的正是活体样品真实的生理反应,所以样品的选择上要多注意。 ...
  • 设备操作: 配制校正液
    内容: 配制校正液时,最好采用先配制好较高浓度的母液,然后稀释的方法配制,不要直接溶解固体,因为校正液中的离子浓度一般较低(大多数是0.01mM~1mM),直接用固体配的话称量的量会很少,导致误差增大,校正时不能达到理想值。 每种离子的校正液要有一高一低两种浓度,原则上是要将测试液中该离子的浓度包含在内,一般高低浓度相差10倍,比如测试液中Na+是0.9mM,校正液就可以是0.5mM和5mM。H+的话原理一样,调节高低两种pH即可。 校正液中除了待测离子外,还应该有测试液中同浓度的其他离子,pH最好也和测试液一致,如果要测定多种离子,可以配制成同一瓶校正液,但校正液中的待测离子浓度要相应改变。 由于不同LIX的选择性不同,所以配制校正液时的离子浓度也是有要求的: H+:pH4-pH9之间。 Na+:10mM—0.5mM,而且溶液中K+浓度不要高于Na+。 K+:10mM—0.05mM,且溶液中Na+浓度不要高于K+。 Ca2+:10mM—0.05mM,且溶液中最好没有Cd2+或者浓度低10倍以上。 Mg2+:10mM—0.1mM,且溶液中最好没有Cd2+和Ca2+或者浓度低10倍以上。 Cd2+:1mM—0.005mM,别的离子基本没什么影响。 NH4+:10mM—0.05mM,电位可能不是很稳定,可以选用大开口流速传感器,如果测试中电位变化过大可以多校正或更换LIX。 NO3-:10mM—0.05mM,Cl-浓度不要太高。 Cl-:10mM—0.5mM,溶液中不能有其他阴离子,可能需要多次校正。 调节校正液的pH需注意,不能用含有待测离子的酸或碱调节,如测定Na+时调节pH值不能用NaOH,否则就使溶液中的Na+含量增加,可用较少量的KOH调节,最好用氯化胆碱或Tris。 ...

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